Fluoptics是******致力于開發實時指導外科手術新型成像系統的公司，特別專注于腫瘤外科手術。公司總部位于法***南部城市格勒諾布爾，是法***原子能委員會微米與納米技術創新中心（MINATEC）研究中心的組成部門之***。Fluoptics***初由法***原子能委員會創辦，工藝技術由法***原子能委員旗下的電子信息技術研究所以及約瑟夫.傅里葉大學共同合作提供，已和法***原子能委員會，******科研中心，******醫學與健康研究所等大學和機構建立了良好的合作關系，并且于2008年獲得了法***工業及研究部門的嘉獎。
成像系統介紹：
依據近紅外成像原理應運而生的Fluobeam具備高靈敏度，開放式設計，靈活可移動，操作簡易等特點，是您科研和外科手術的好幫手。 Fluobeam適用于小動物和大動物的腫瘤實時監測，腫瘤切除實時指導，腫瘤療效評估 ，以及腫瘤模型的建立，藥物示蹤，藥物代謝分布等領域的高靈敏度2D活體成像。尤其對于新生血管及淋巴結有很好的成像效果。
Fluobeam? 成像系統特點：
? 手持式的成像系統，靈活，便攜；
? 開放式的成像設計，不受動物大小的限制；
? 實時成像，可指導外科手術的精確操作；
? 極高的靈敏度，可探測到皮摩爾***（10-12）甚至飛摩爾***（10-15）的熒光信號；
? 成像速度快，10ms-1s即可完成清晰成像；
? 不需要暗室也可以實現完美成像；
? 數據可以以圖片，video多種格式無壓縮輸出，與分析軟件Image J 完全兼容；
? 適用于CY5以上的所有熒光探針（630-800nm）；
? 光學探頭防水式設計，可浸泡入消毒試劑，更符合科研及手術的實際需求；
? 激光源為******激光器，為高質量成像提供保障；
? 友好的軟件系統，操作簡單。
目前，Fluobeam? 成像系統有兩種型號可供您選擇：Fluobeam? 700和800，激發波長分別為680 nm、780 nm。
自主研發的近紅外熒光染料：
Fluoptic提供的不僅僅是***個光學成像系統，眾多可選的近紅外的熒光探針更有助于您深入研究，探討疾病的發生發展，直至幫助您提出合理的解決方案。
Angiostamp? 是***種特異性的識別αVβ3整合素的近紅外熒光試劑。在新生血管以及腫瘤的上皮細胞上，αVβ3整合素被激活并且過量表達。Angiostamp?可對腫瘤血管生成過程中的新生血管以及αVβ3陽性的腫瘤細胞以及腫瘤轉移進行標記和成像。
SentiDye?是***種近紅外熒光的脂質納米顆粒，與水溶性的染料相比，SentiDye?表現出高度穩定的化學性質和光學成像性質。可用于血管網絡的活體成像，以及淋巴結和腫瘤成像。
應用領域總結：
? 腫瘤生物學
腫瘤動態監測：實時觀察腫瘤轉移,增殖過程，并對其進行拍照，錄像。
腫瘤治療療效評估：腫瘤治療后，觀察腫瘤的大小，形狀，血管等性狀。
腫瘤切除實時指導 ：可檢測到肉眼分辨不清的腫瘤小病灶，實時指導腫瘤切除。
腫瘤動物模型的建立 ：荷瘤小鼠的腫瘤檢測。
腫瘤新生血管成像 ：腫瘤部位都會伴隨豐富的新生血管，同理，豐富的新生血管也是指示腫瘤的標志物之***，腫瘤藥物研發的靶標之***就是血管新生，所以腫瘤新生血管的成像在腫瘤研究中有著重要的意義。
? 藥學
藥物靶向治療 ：藥物標記近紅外染料后，對進入動物體內的熒光進行追蹤，查看熒光物質分布所指示的位置，來分析藥物的靶向性。
藥物代謝分布 ：動態監測近紅外熒光標記的藥物分子的體內運動過程。
? 血管生物學
血管網絡成像，動脈靜脈成像：腦部，眼皮等部位的血管成像，檢測血管的滲漏和供血等。
血管接駁指導
? 淋巴節及淋巴引流成像：
1， 惡性腫瘤由于原發病灶很小，不易發現，但很早出現淋巴結轉移，通過不同部位的轉移淋巴結可尋找原發病灶，對腫瘤的完全切除及準確切除具有很重要的指導作用。
2， 另外，動物實驗和臨床研究發現頸部淋巴回流障礙可導致腦組織形態學、生理功能及行為異常；
3， 中央神經系統（CNS）的淋巴引流參與了大分子物質回收，顱內壓的調節， CNS免疫等生理過程，也開始被人們關注。
? 其他領域
實時手術引導 ；大動物成像 ；熒光染料的評估 ；生物分子的體內分布 等性能闡述及應用實例：
1. 高靈敏度：
在右前肢遠端注射20pmol的靶向標記淋巴結的近紅外染料標記的量子點， 并在15分鐘（左）和7天后（右）對小鼠進行近紅外成像。在注射后的15分鐘時就可清晰的看到兩個和右腋窩淋巴結相關的區域，7天后熒光開始擴散。
不同濃度的量子點注射入小鼠體內后， 24小時后測量的熒光信號和背景噪音的信噪比值可精確到2pmol的熒光染料。
2. 大動物成像
由于Fluoptic是開放式的工作環境，不會受到成像箱體大小的限制，可以完成小動物成像，也同樣適用于大動物成像，新西蘭兔，恒河猴，乃至羊，猩猩都可以用***個系統完成，免去您為不同動物購買不同儀器的煩惱，經濟實惠，操作簡單，節省空間。
3. 藥物示蹤：
淋巴結靶向性的藥物于腫瘤周圍皮下注射后（粉斑），15min(A)，1h(B)和3h(C)分別對小鼠進行成像，可清楚地觀察到藥物的動態遷移過程，并逐漸指示腫瘤引流淋巴結的精確定位，解剖后對淋巴結的光學和熒光成像也驗證了藥物靶向成像的正確性(D)
4. 生物大分子的體內示蹤：
隨著醫學及生物學研究的飛速發展，科研人員越來越希望能直接監控活體生物體內的細胞活動和基因表達，有效地研究觀測轉基因動物生理過程，譬如活體動物體內腫瘤的生長及轉移、感染性疾病發生發展過程等。活體動物光學成像技術作為新興的成像技術以其操作簡單、結果直觀、靈敏度高、成本低等特點，成為活體動物成像的***種理想方法。
活體動物體內光學成像分為生物發光和熒光兩種技術。熒光成像由于其成本低，信號強，操作簡單而越來越被被科研者青睞，但傳統的熒光成像應用到活體動物成像上存在著種種弊端，比如：動物組織自發熒光干擾， 光的組織特性吸收等都影響了傳統熒光成像的應用。
由于近紅外激光器產生的激發光比白光具有更深的組織穿透性，更深層、更小的目標也能夠檢測到。而且細胞和組織的自發熒光在近紅外波段***小。并且在檢測復雜生物系統時，近紅外染料具備無毒性，高靈敏，信噪比高，操作簡單等特點，能提供更高的特異性和靈敏度。因此基于近紅外染料的體內熒光成像（活體成像），也是近幾年迅速發展的新興領域。
Fluoptic 公司研發的Fluobeam系列成像系統，克服了傳統熒光活體成像的弊端，采用近紅外染料標記和實時成像，為科研工作者提供更精確，更靈敏的實驗數據，并可以做到定性定量研究。
5. 腫瘤成像及體內分布：
利用熒光探針活體檢測腫瘤的發生，發展，以及病灶轉移情況，提供定性定量研究結果。
6. 淋巴結和血管成像：
Sentidye?熒光染料可用于血管網絡的活體成像，以及淋巴結和腫瘤成像
7. 手術實時引導：
通常在癌癥手術中確認淋巴結等組織的位置非常困難。如果使用這***手術“導航”系統，就能解決上述問題，通過***小限度的切除對患者進行治療。肉眼并不能看到近紅外光，但通過超高靈敏度攝像機可以捕捉近紅外的微弱光線。利用監控器觀察攝像機拍下的彩色圖像，可以清楚地看到發光的血管、淋巴結和周圍臟器，從而準確掌握相關組織和器官的位置并進行手術。雖然利用放射線也能確認淋巴結和血管位置，但這種方法會讓患者受到微弱輻射，治療場所也因此受到限制。而近紅外線和近紅外染料對人體無害，可以多次使用，患者負擔也大為減小。
在腫瘤發生早，晚期，近紅外熒光能清楚的區分正常組織和病變部位，為***的腫瘤切除提供科學依據；特別針對腫瘤的大面積轉移，可高靈敏的指示微小的病灶，指導對其徹底清除。為腫瘤的早期診斷以及微小轉移病灶的清除帶來了新希望。Fluobeam是癌癥手術和腫瘤研究可視化的好幫手。
8. 其他疾病的早期診斷：
關節炎：關節炎的致病機制還并不十分清楚，但可以肯定的是在疾病活躍期許多免疫因子被激活，炎癥因子，細胞因子，白介素和***些其他的因子被分泌出來，促進炎癥反應，并導致相鄰關節結構的破壞，而且在滑液膜區域會激發新生血管的出現，以及微循環的加劇。已經有超聲和核磁共振的方法應用到關節炎的臨床診斷和疾病評估上，但二者都不能監測早期炎癥反應的組織病理學過程。近紅外的診斷方法與現有的臨床方法相比，更簡單，更經濟，而且對患者無毒性，無不適反應。左圖為雙手關節炎患者，右圖為健康對照。
已發表文獻：
? Intraoperative fluorescence imaging of peritoneal dissemination of ovarian carcinomas. A preclinical study. Eliane Mery, Eva Jouve, Stephanie Guillermet , Maxime Bourgognon, Magali Castells,Muriel Golzio, Philippe Rizo, Jean Pierre Delord, Denis Querleu, Bettina Couderc. Gynecologic Oncology .2011 Apr 2.
? Intraoperative near-infrared fluorescence imaging of colorectal metastases targeting integrin α(v)β(3) expression in a syngeneic rat model. M. Hutteman, J.S.D. Mieog, J.R. van der Vorst, J. Dijkstra, P.J.K. Kuppen, A.M.A. van der Laan, H.J. Tanke, E.L. Kaijzel, I. Que, C.J.H. van de Velde, C.W.G.M. L€owik, A.L. Vahrmeijer. Eur J Surg Oncol. 2011 Mar;37(3):252-7. Epub 2011 Jan 6
? Image-guided tumor resection using real-time near-infrared fluorescence in a syngeneic rat model of primary breast cancer. Mieog JS, Hutteman M, van der Vorst JR, Kuppen PJ, Que I, Dijkstra J, Kaijzel EL, Prins F, L?wik CW, Smit VT, van de Velde CJ, Vahrmeijer AL. Breast Cancer Res Treat. 2010 Sep 7.
? Cadmium-free CuInS2/ZnS quantum dots for sentinel lymph node imaging with reduced toxicity. Pons T, Pic E, Lequeux N, Cassette E, Bezdetnaya L, Guillemin F, Marchal F, Dubertret B. ACS Nano. 2010 May 25;4(5):2531-8.
? Fluorescence imaging and whole-body biodistribution of near-infrared-emitting quantum dots after subcutaneous injection for regional lymph node mapping in mice. Pic E, Pons T, Bezdetnaya L, Leroux A, Guillemin F, Dubertret B, Marchal F. Mol Imaging Biol. 2010 Aug;12(4):394-405. Epub 2009 Nov 21.
? Novel intraoperative near-infrared fluorescence camera system for optical image-guided cancer surgery. Sven D Mieog J, Vahrmeijer AL, Hutteman M, van der Vorst JR, Drijfhout van Hooff M, Dijkstra J, Kuppen PJ, Keijzer R, Kaijzel EL, Que I, van de Velde CJ, L?wik CW. Mol Imaging. 2010 Aug;9(4):223-31.
? near-infrared image-guided surgery for peritoneal carcinomatosis in a preclinical experimental model. Keramidas M, Josserand V, Righini CA, Wenk C, Faure C, Coll JL. Br J Surg. 2010 May;97(5):737-43.Intraoperative
? Image-guided tumor resection using real-time near-infrared fluorescence in a syngeneic rat model of primary breast cancer. Mieog JS, Hutteman M, van der Vorst JR, Kuppen PJ, Que I, Dijkstra J, Kaijzel EL, Prins F, L?wik CW, Smit VT, van de Velde CJ, Vahrmeijer AL. Breast Cancer Res Treat. 2010 Sep 7.
? Novel intraoperative near-infrared fluorescence camera system for optical image-guided cancer surgery. Sven D Mieog J, Vahrmeijer AL, Hutteman M, van der Vorst JR, Drijfhout van Hooff M, Dijkstra J, Kuppen PJ, Keijzer R, Kaijzel EL, Que I, van de Velde CJ, L?wik CW. Mol Imaging. 2010 Aug;9(4):223-31.
? Optical small animal imaging in the drug discovery process. Dufort S, Sancey L, Wenk C, Josserand V , Coll JL. Biochim Biophys Acta. 2010 Dec;1798(12):2266-73. Epub 2010 Mar 24.
? Drug development in oncology assisted by noninvasive optical imaging Sancey L, Dufort S, Josserand V, Keramidas M, Righini C, Rome C, Faure AC, Foillard S, Roux S, Boturyn D, Tillement O, Koenig A, Boutet J, Rizo P, Dumy P, Coll JL. Int J Pharm. 2009 Sep 11;379(2):309-16. Epub 2009 May 23.
滬公網安備31011502016460號
